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冷冻干燥的原理与实践
冷冻干燥的原理与实践
样品经完全冻结,并在一定真空条件下使冰升华,从而达到低温脱水之目的,此种过程称为冷冻干燥(Frccze—drying,Lyophilizaton)。
冻干的固体物质由于微小冰晶体的升华呈现多孔结构,并保持原先冻结时的体积,加水后极易溶解,立即恢复原来的新鲜状态。
制品在升华过程中温度保持在最低共熔点以下(通常为—25℃左右),因而对于那些不耐热的物质,诸如酶、激素、核酸、血液和免疫制品等的干燥尤为适宜。
干燥的结果能排出95—99%以上的水分,有利于制品长期保存。
制品干燥是在真空条件下进行,故不易氧化。
针对部分生化药物的化学、物理、生物的不稳定性,冷冻干燥已被实践证明是一种非常有效的手段。
随着生化药物与生物制剂的迅速发展,冷冻干燥技术将越来越显示其重要性与优越性。
一、冷冻干燥机的结构与功能简介
冷冻干燥机系由制冷系统、真空系统、加热系统、电器仪表控制系统所组成,详见图1—8。
主要部件为干燥箱、凝结器、冷冻机组、真空泵组和加热装置等。
制品的冻干是在干燥箱中进行。
干燥箱内搁板采用铸铝板制成,两排冷管及热管浇注其中,分别用来对制品进行冷却和加热。
干燥箱顶面装有真空传感器,它将真空度转变成电讯号,并由电阻真空计直接显示出箱体中小于0.5托(即毫米汞柱)的压力。
箱门四周镶嵌密封橡胶圈,临用前涂以真空脂保证箱体密封。
凝结器内部装有螺旋状冷气盘管六组,其工作温度低于干燥箱内制品的温度,最低可达—60℃。
制品升华的水气能充分凝结在盘管上,从而保证冻干过程的顺利进行。
在冻干结束后,可打开凝结器上部进水管路的节门进行冲霜。
为了避免水溢进干燥箱,在凝结器中部装有溢水管,并从底部阀门将水放出。
最后再吹热风使凝结器干燥。
机械泵(旋片式真空泵)与增压泵(罗茨真空泵)串接以对真空系统抽空。
增压泵在1~10—’托时有较大的拽速,弥补了机械泵在该真空度下抽速较小之不足。
罗茨泵由于转速很高,仅能工作在低压强范围,必须配机械泵作为前级泵,待压强达10托以下始允许启动,否则由于负荷太重而使机器损坏。
在机械泵的进气口安装了一个带自动放气的电磁真空阀,它与机械泵为同一控制电源,当停泵时,电磁阀门自行关闭,同时向真空泵内放气,既保护了真空系统,又防止泵向真空系统返油。
此外干燥箱与凝结器之间装有大口径真空蝶阀,凝结器与增压泵之间装有小蝶阀及真空测头,以便对各部进行找漏检查。
在制冷系统中,三台4000大卡/小时冷冻机并联使用。
根据负荷多少,冷冻机可以开一台,,也可以同时开两台或三台。
由水冷凝器出来的高压制冷剂液体(氟利昂—22),经过干燥过滤器、热交换器及电磁阀到达膨胀阀。
膨胀阀也称节流阀,它能使制冷剂有节制的进入蒸发器。
由于冷冻机的抽吸作用使蒸发器内的压力下降,液体制冷剂吸收环境的热量而迅速沸腾蒸发。
低压的制冷剂气体被冷冻机抽回,再经压缩成高压气体,最后被冷凝器冷却凝聚为高压液体,完成了一次制冷的循环。
干燥箱搁板中的冷气排管以及凝结器都属于制冷系统中的蒸发器,它们是通过两个不同的电磁阀来供应制冷剂。
人工调节膨胀阀的开度,可以使通过的液体氟利昂恰好在蒸发器的末端蒸发完毕。
但随着冷却过程的延续,将会有剩余的液体制冷剂返回压缩机,从而引起液体压缩而造成对机械的严重危害。
实际上冻干机中所用的感温式膨胀阀还可以按照需要自动调整阀门的开度。
在感温式膨胀阀的感温泡内装入液体氟利昂,并安装在蒸发器的末端,俟该部位冷却后,感温泡内的蒸气压力随之下降,通过毛细管的传感使膨胀阀顶部气室的膜片上升,顶杆随之带动阀针上移,从而减少了制冷剂的流量。
含有一定水分的氟利昂在通过膨胀阀进液小孔时,由于温度骤然下降,会使制冷剂中水的溶解度降低而析出冰栓,通常在干燥过滤器中使用硅胶脱水,并用金属网和毛毡作为滤材,以防止膨胀阀小孔冰塞与脏堵。
氟利昂—22的蒸发热与蒸发温度有关,每降低10℃,蒸发热约可提高5%,热交换器利用了从蒸发器返回的部分低压液体氟利昂使冷凝器出来的高压氟利昂液体事先冷却,这样不仅有助于制冷效率的提高,同时这种热量交换还可促使回到压缩机的制冷剂恰好达到超热蒸气状态,避免了液体压缩的危险,可谓一举两得。
加热装置是由油泵、油箱、电加热器等所组成的一个循环管路。
油箱中的仪表油经电炉丝加热后,由油泵输送至干燥箱搁板中的热排管,对制品进行加温,提供异华热。
当需要降低油温时,可开启冷却水管的电磁阀。
控制台则为全机电气仪表控制系统。
干燥箱中的各层板温、制品温度、油温以及凝结器的温度系利用统一型号的铂热电阻与动圈式温度指示仪进行远距离测量。
若将铂热电阻与六点式自动平衡电桥相接,还可实现多点温度巡回检测与记录。
板温的控制则是通过动圈式温度指示调节仪上的定值电接点装置而实现的,当板温至给定值时,调节仪表即自动切断电热丝和油泵电源,从而维持恒温。
在低温自动控制时,采用另外一种方式,待板温到达预定的温度值,通往干燥箱的电磁阀自动关闭。
电阻真空计的原理见图,1—9。
真空检测器A2是用一根温度系数较大的细金属丝绕制而成,并固定在一端开口的玻璃管中。
当A1与常压相通,可调节W:
使电桥平衡,指示电表指零。
当A2接入真空系统,低压强气体的热传导显著减少,电流通过A1所产生的热量不易散发,致使A。
阻值增加,电桥失去平衡,电表指针偏转的程度即可反映出系统真空度。
A1与A2电阻值相同,但前者是固定在封闭的玻璃管中,以补偿环境温度对A2阻值的影响。
仪器的准确度是靠调节W,来校正。
与1毫安指示电表串接的10欧姆电阻输出0~10毫伏的标准联络讯号,若与多点式自动电位差计配合,即可实现干燥箱与泵端真空度的自动记录。
当系统内压强升高到给定的危险值时,设有定值电接点装置的自动电位差计尚能实现自动报警。
经典的麦氏真空计仅适用于永久气体,且有汞蒸气,操作也不方便。
电阻真空计能反映气体的全压,并具有响应时间快和适合遥测等优点,已在近代的冻干机中广泛应用。
二、冷冻干燥的基本原理与实践
对冻干制品的质量要求是:
生物活性不变,外观色泽均匀,形态饱满,结构牢固,溶解速度快,残余水分低。
要获得高质量的制品,对冻干的理论和工艺应有一个比较全面的了解。
冻干工艺包括预冻结、升华和再干燥三个阶段。
合理而有效地缩短冻干的周期在工业生产上具有明显的经济价值。
(一)最低共熔点及其测定方法
溶液的冻结过程并不象水那样简单。
图l—10的MQ与NQ线段分别表示溶液的冰点下降曲线与溶解度曲线。
当组成为y的溶液降温至冰点a时,开始析出水的冰晶。
随着温度的继续下降,冰晶析出越来越多,溶液浓度也就越来越高。
由于冰点温度是溶液浓度的函数,因此当温度降低至b时,浓度必然升高至E。
当温度降低至c,溶液的浓度则到达QMQ与NQ分别表示溶液对冰饱和及溶液对溶质饱和,交点Q的状态必然是冰与溶质同时结晶并与溶液成三相平衡。
根据相律此时自由度等于零,只有当溶液全部冻结以后,温度才能继续下降。
Q点的温度称为共熔点或共晶点。
共熔点及其相应的组成均为物质的特性常数,而与溶液的起始浓度无关。
例如氯化钠、氯化钙、硫酸铵,它们的共熔点及共熔组成分别为—21.2℃(23.3%)、—55℃:
(30%)及—18.3℃(39.8%)。
虽然多组份溶液的相平衡要比双组份复杂得多,但其最低共熔点仍然是反映所有溶质与溶剂共同结晶的特征温度。
在冻结与异华过程中,若制品的温度超越了最低共熔点,部分溶质或全部溶质将处于液相之中。
冰晶体的异华被液体浓缩蒸发所取代,干燥后的制品将发生萎缩,溶解速度降低。
活性物质由寸:
长时间处于高浓度电解质之中,也容易变性。
可以认为,最低共熔点乃是获得冻干最佳效果的临界温度。
最低共熔点是从液相转变为固相的临界温度。
溶液全部凝固时,荷电粒子迁移停止,电导最小;而有少量液体存在时,电导就会显著增加。
将电导对温度作图,就可以方便地求出最低共熔点。
图l—11,l—12是典型的双组分溶液的电导—温度曲线。
按照相平衡理论,在共熔点时仅有相的变化,而温度是不变的,所以在共熔点时,电导的变化应该是一垂直于温度座标的线段。
实际上由于我们受低温条件所限,不可能将此实验进行得无限慢,该垂直线往往会出现一个不同程度的曲折。
因此我们取拐点温度Q作为共熔点仍然应该是比较准确的。
用这种实验方法测得氯化钠溶液的最低共熔点为—21.2℃,与文献报道用相图方法测得的结果一致。
我们又用同样的方法测定了一些常用的生化物质的共熔点见表1—8。
一般而言,多组份溶液的最低共熔点将比其中任何一种溶质的共熔点更低。
氯化钠和乳糖混合溶液的电导—温度曲线见图1—13,在最低共熔点时电导的曲折远不如双组份溶液明显。
虽然不同配比的溶液测出其最低共熔点相同,但当氯化钠比例较小时,电导的曲折现象基本上被掩盖。
由此也得到启示,当—种共烙点很低的物质在处方中占的比例非常小时,它对最低共熔点的影响实际上也是微不足道的。
表1-8用电导法测定一些物质的共熔点
溶液
共熔点℃
溶液
共熔点℃
6%甘露醇
-0.9
6%乳糖,10%氯化钠
-24.2
6%乳糖
-0.8
6%ATP
-0.7
3%乳糖,3%甘露醇
-0.9
ATP,甘露醇,乳糖
-0.9
氯化钠
-21.2
5%水解明胶
-0.5
10%葡萄糖
-3
6%蔗糖
-1
测量共熔点可利用低温冰箱或干冰在酒精中气化而获得低温。
实验时在制品溶液中插入电导电极,并在电极正中间插入温度计、半导体热敏电阻或铂热电阻。
先将溶液冻至最低共熔点以下,然后再缓慢升温,并同时记录温度和电导值。
降温过程易于产生过冷现象而不宜采用。
本实验也可直接在冻干机中进行。
电导电极的导线可在干燥箱侧面的接线柱上引出,温度则可借助原有的铂热电阻。
用这种方法可以测量并监视每一批制品在冻结或升华时的共熔点,从而加以必要的控制。
直读式的DDS—11A型电导率仪是实用的。
它输出0~土0毫伏的信号还可接自动电位差计进行电导—时间曲线自动记录。
若再同时配合温度—时间曲线自动记录,即可经处理而得到电导—温度曲线。
(二)冻干过程中热量的传递
在冻结过程中,制品热量的转移可以通过传导,对流、辐射三种方式进行。
热量传递的速度取决于界面的温差、传热介质的导热系数与导热面积。
在升华干燥过程中,由于气压很低,因而主要依赖固体热传导。
搁板的热量传递给升华面要经过金属板、玻璃容器和制品本身。
在较低的压强下,升华面由于不断带走热量,它的温度可以保持在最低共熔点以下。
由于玻璃和冰都属于不良导体,为了给升华面提供足够的热量,必须将搁板温度提高到一定程度。
这样在搁板与升华面之间,自然就形成了一个温度梯度,如图l—“所示。
升华面的温度是在冻干过程中重要的参数,可惜无法直接测量,因为它是一个不断移动的横截面。
制品底部的温度也十分重要,因为它最容易超过最低共熔点。
遗憾的是目前测量制品温度还是通用铂热电阻,其高度在20毫米左右,而一般制品的厚度小于10毫米,如果竖放在制品中,测得结果缺乏代表性。
可以利用一广口称量瓶,将铂热1电阻平放并浸在制品中,但测量的结果也仅反映制品的平均温度。
(三)制品的冻结
溶液速冻时(每分钟降温10~5q℃),晶粒保持在显微镜下可见的大小;相反,慢冻时(1℃/分)形成的结晶肉眼可见。
粗晶在升华后留下较大的空隙,可以提高冻干效率;细晶在升华后留下的间隙较小,使下层的升华受阻。
速冻的成品粒子细腻,外观均匀,比表面积大,多孔结构好,溶解速度很快,但成品的引湿性相对也要强些。
制品中通常都会含有一定的电解质。
在冻结过程中,电解质的浓缩对某些生物活性物质可能会产生一些变性,有时甚至会引起成品澄明度的变化。
冻结对具有生命的细胞来说影响更为严重。
由于破坏了正常的膜平衡,加上细胞内外的冰晶对细胞结构的伤害,,往往引起生命的死亡。
虽然速冻可以减轻这些影响,但目前的冻干机尚难以达到这样的要求。
此外速冻对提高冻干效率也并不利。
对于那些生命活性物质的冻干主张加保护剂,例如明胶等。
近来认为,这种保护剂之所以能起到有益的作用是由于胶体渗透压使细胞中的水分在冻结以前已被渗出,这样由于冰晶体的形成和电解质浓缩效应所产生的破坏作用,就不是在细胞内,而主要是在细胞外出现。
实践证明这种方法是有效的,并可在还原时基本上不损坏其生命力。
制品在冻干机中预冻有两种方式:
一种是制品与干燥箱同时降温;另一种是待干燥箱搁板降温至—40℃左右,再将制品放入。
前者相当于慢冻,后者则介于慢冻与速冻之间,因而常被采用,以兼顾冻干效率与产品质量。
此法的缺点是制品入箱时,空气中的水蒸气将迅速地凝结在搁板上。
而在升华初期,若板升温较快,由于大面积的升华将有可能超越了凝结器正常的负荷。
此现象在夏季尤为显著。
中型冻干机的额定满载为25公斤水,冻结至—35℃的冰约需3000大卡的制冷量。
将三台冷冻机同时启动,可以加快冻结的速度。
制品的冻结处于静止状态。
经验表明,过冷现象常易发生,致使制品温度虽已到达共熔点,但溶质仍不结晶。
为了克服过冷现象,制品冻结的温度应低于共熔点以下一个范围,并需保持一段时间,以待制品冻结完全。
据报导,对于某些共熔点较低的溶液可采用“往复冻结”的方法来避免过冷现象。
例如对某一共熔点为—25℃的制品,可先慢速预冻到—50℃左右,然后使制品温度回升至共熔点附近(例如—27℃),维持30~60分钟,最后再降温至—40℃。
经过这样的处理,据云还可使制品的晶体结构改组,从而大大提高冻干效率。
(四)升华的条件与速度
冰在一定温度下的饱和蒸气压大于环境的水蒸气分压时即可开始升华;比制品温度更低的凝结器对水蒸气的抽吸与捕获作用,则是维持升华所必需的条件。
气体分子在两次连续碰撞之间所走的平均距离称为平均自由路程,它与压力成反比。
在常压下,由于其值很小,升华的水分子很容易与气体分子碰撞又返回到蒸气源表面,因而升华的速度很慢。
随着压力降低至0.1托以下,平均自由路程将增大10‘倍,使升华速度显著加快,飞离出来的水分子很少改变自己灼方向,从而形成了定向的蒸气流。
机械真空泵与增压泵在冻干机中仅起着抽除永久气体的作用,以维持升华所必需的低压强。
1克水蒸气在常压下为1.25升,而在0.1托时却膨胀为10000升。
普通的真空泵在单位时间内抽除如此大量的体积是不可能的,凝结器实际上却成了专门捕获水蒸气的真空泵。
制品与凝结器的温度通常为广25℃与—60℃。
水在该温度下的饱和蒸气压分别为0。
47托与0.0081托,因而在升华面与冷凝面之间便产生了一个相当大的压力差。
如果此时系统内空气的分压可以忽略,它将促使制品升华出来的水蒸气,以一定的流速定向地抵达凝结器而结成冰霜。
可以这样认为,凝结器的温度决定了这种“真空泵”的极限真空度,而凝结器的冷凝面积与制冷能力则决定了它的抽气速率。
水蒸气的流速与升华面及冷凝面的温度差或压力差成正比,而与蒸气流动时的阻力成反比。
提高制品升华温度或降低凝结器的温度,都有助于升华速度的提高。
但制品允许的最高温度受共熔点所限,而凝结器的最低温度又受制冷剂及机械性能所限。
最有效的措施是合理地加大凝结器的冷凝面积与制冷能力,以增加凝结器在单位时间内捕捉水蒸气的重量,从而可以使制品保持在最低共熔点以下,并加快升华的速度。
设25公斤的制品在5小时内基本升华完毕,则每小时约有3500大卡的热量在冷凝面上释放。
应考虑到冰为传热的不良导体,会影响到凝结器实际的效率。
制品升华后表面留下的干壳层本身就是二种对于蒸气流动的阻力,其数值决定于干壳的厚度和结构,并与制品的浓度及成分有关。
干燥箱与凝结器间的联结设计得短而粗,并接一大口径蝶阀以减少管道的阻力。
冰的升华热约为6了2卡/克。
如果在升华过程中不供给热量,那末制品只有降低内能来补偿升华热,直至其温度与凝结器温度平衡后,升华也就停止。
为了保持升华面与冷凝面的温度差,必须对制品提供足够的热量。
(五)冻干的程序与冻干曲线的分析
分装制品的容器放入与冻干箱尺寸相适应的金属盘内。
在进箱以前宜等待药液泡沫消失。
根据需要俟干燥箱降温到—35℃左右,将制品迅速放入;或者将制品装箱后再行降温。
将测量制品温度的铂热电阻安置在1/,2瓶有代表性的样品溶液中,并放在对着观察孔的位置,便于在过程中监视制品的温度和干燥的进行情况。
也可放对照的等量和倍量样品溶液作参考。
待产品达到—35℃左右,再恒温1—2小时,以保证箱内全部制品冻结完全。
在抽真空以前,凝结器需要事先降温互—50℃以下,以免水分污染真空泵。
首先开启旋片式真空泵,待真空度达到10托以下,再启动增压泵。
一般在半小时内即可使真空度达到0。
1托左右,便可对搁板进行加热,冻结的制品随之开始大量升华,箱内压力也可见到有些上升。
在升温的第一阶段(即大量升华阶段),制品温度要低于最低共熔点一个范围,因此板的升温应加以控制。
若制品已经部分干燥,但温度却超过了最低共熔点,此时融化的液体组成将如图土—10所示落在E点的位置,即它对冰饱和,但对溶质却未饱和,因而已干燥的溶质将迅速溶解进去,最后浓缩成—:
·薄层僵块,外观极为不良,溶解速度很差。
若制品的融化发生在大量升华过程的后期,则由于融化的液体数量较少,因而被已干燥的多孔性固体所吸收,造成冻干后的块状物有所缺损,加水溶解时仍能发现局部溶解速度较慢。
还应指出,如果在预冻过程中制品没有冻结完全,则在升华干燥前期冻块往往软化,产生气泡,并在表面形成粘稠状物,从而影响升华干燥继续有效地进行。
在大量升华过程中,虽然搁板和制品温度有很大悬殊,但由于板温、凝结器温度和真空度基本上不变,因而吸热升华比较稳定,制品温度保持恒定。
随着制品自上而下层层干燥,冰层升华的阻力逐渐增大,制品温度相应也会有些小幅度的上升。
直至用肉眼
已见不到冰晶的存在,此时90%以上的水分已经除去。
大量升华的过程至此已基本结束,即使温度上升至最低共熔点以上,制品也不致发生融化。
为了确保整箱制品大量升华完毕,板温仍应保持一个阶段再进行第二阶段的升温。
剩余百分之几的水分称为残余水分,它与自由状态的水在物理化学性质上有所不同。
残余水分包括了化学结合之水与物理吸附之水,诸如化合物的结晶水,蛋白质通过氢键结合的水以及固体表面或毛细管中吸附的水等。
由于残余水分受到种种引力的束缚,其饱和蒸气压则呈不同程度的降低,因而干燥速度明显下降。
虽然提高制品温度可以促进残余水分的气化,但若超过某一极限温度,生物活性也可能会急剧下降。
保证制品安全的最高干燥温度需要由实验来确定。
通常我们在第二阶段将板温控制在+30℃左右,并保持恒定。
在这一阶段初期,由于板温升高,残余水分既少又不易气化,因此制品温度相对上升较快。
但随着制品温度与板温逐渐靠拢,热传导就变得更为缓慢,需要耐心等待相当长的一段时间,制品温度才能与板温重合(或相差l℃以内),表示水分已很少或难以再蒸发,告知冻干的终点已经来临。
实践经验表明,残余水分干燥的时间与大量升华的时间几乎相等,有时甚至还会超过。
即使这样,对于某些蛋白质的结合水有时还是很难去尽。
将板温与制品温度随时间的变化记录下来即可得到如图1—15所示的冻干曲线。
如果采用自动平衡电桥,则完整的冻干曲线就可连续地自动描绘出来。
比较典型的冻干曲线系将板升温分为两个阶段(见图1—15):
在大量升华时板温保持较低,根据实际情况,一般可以控制在—10℃至+10℃之间;第二阶段则根据制品性质再将板温适当升高。
此法适用于共熔点较低的制品。
若对制品的性能尚不甚清楚,机升华面出气不畅,而将上部的干燥层顶裂所致。
凝结器制冷能力的下降会使它本身温度很快上升,系统内的压力将随之升高。
由于升华速度相应下降,制品也可能发生融化。
真空度下降的趋势应该引起警惕和重视。
果断的措施是立即停止加热,必要时甚至可对制品降温。
在先进的冻干机中设有真空度自动报警及控制装置,当系统的真空度下降至给定的限度值时,会发出光、声信号并能自动关闭加热系统。
系统总压力究竟应该保持在什么水平上才能获得最佳冻干效果,一直是人们感兴趣的问题。
单纯追求较高的真空度(0,05—0.1托),实际上不一定获得裨益。
提高系统的真空度固然可以增加分子平均自由路程,从而有利于升华,但由此而引起的热传导效果降低以及气体过度膨胀等因素却反而会使升华速度减慢。
冻干的最适压力似乎还很难用定量的方法来计算,但近代的实践表明,0.2~0.3托看来是最合理的真空度。
在此压力范围之内,气体的热传导变得显著起来,升华效率可以提高。
现代的冻干机还配备有自动调压装置。
自干燥箱一侧,即离真空泵的最远端充入无菌干燥惰性气体或空气,充气量多少则借助真空测量控制仪表进行监视与调节,使箱内气压能够保持在所要求的水平范围。
此法既可提高气体热传导效果,又可在升华表面形成定向的切面气流,将升华的水蒸气推向凝结器,因而有效地提高了升华速度。
(七)制品的厚度和容器
无论是用瓶子或盘子进行冻干,制品厚度应加限制。
液体过厚会使固相层的热传导速度降低,降温过慢,升华的阻力增加,制品底部易于融化,直接影响产品的质量和冻干周期。
为了在18小时左右完成大量升华和再干燥,产品厚度不宜超过12毫米,最多不应超过15毫米。
500毫升冻干专用的输液瓶比一般盐水瓶瘦长些,可以冻干200毫升的制品(如血浆)。
事先用旋冻机的电机直接带动输液瓶,在—30’一—40℃的冷酒精浴中垂直高速旋转,制品受离心力的作用在瓶壁上迅速冻结成壳。
也可使用壳冻机,它将输液瓶置水平的滚轴上缓缓转动,制品与冷酒精浴不断接触而冻结成壳。
然后再放在金属外套中,进冻干机直立或平卧升华干燥。
安瓿或青霉素瓶亦可采用专门的设备整盘旋冻以增加升华面积。
在盘内装冷盘管,并通过风扇提高热交换效能,通过盘子的缓慢旋转使制品冻结并形成一抛物面的壳形升华面。
调整转盘的角度可使升华面有不同程度的增加。
用盘子散装冻干时,用金属片适当分格,可以提高热传导效率。
将浓度调整在合适的范围以内,并适当减少制品的厚度,能明显缩短冻干周期。
若制品的厚度适宜,则采用直径小的容器可提高‘冻干机的装量。
浓度、厚度和瓶身直径三因素统筹考虑,可以寻求最短的冻干周期与最高的生产效率。
安瓿在冻干过程中底部有时会破裂,可能的原因是制品在冻结过程中体积膨胀,以及安瓿本身有应力,耐受不了温度的骤然变化。
宜采用较厚玻璃的安瓿,尤其要避免薄底,在升华阶段初期要注意逐渐加热。
青霉素瓶虽然价格较高,但分剂量制剂尚必须应用。
此外这种容器在加塞以后还可以插入细针来抽除瓶内气体便于真空保存。
值得介绍的是,国外先进的冻干机可在箱内自动真空加塞。
在装箱以前把胶塞如图l—16所示那样塞入一部分,露在瓶口外部的凹槽便成为气体升华的通道。
冻干结束以后,在真空状态下(或放入干燥的惰性气体),通过油压装置使干燥箱的搁板自下而上移动,胶塞便全部进入瓶口。
(八)药液的浓度与冻干制品的附加剂
人们曾设想用提高药液浓度来减少制品厚度,以缩短冻干周期,但这并不能在任何情况下都如愿以偿。
过高的浓度使干燥层孔隙变小,升华阻力增大,并且使制品易于融化。
按照相平衡中的“杠杆原理”,溶液浓度越高,在超过最低共熔点时液体占的比例越大。
若溶液浓度很小,则虽然制品局部的温度超过了最低共熔点,但由于融化的液体数量相对很少,也不致产生明显的不良影响。
此外浓度过高,还会给药液过滤和灌注带来困难。
过低的浓度能增大干燥层的空隙,并使产品疏松,但引湿性太强,欲保持较低的残余水分也比较困难。
此外由于比表面积过大,促使制品容易萎缩,干燥后的成品也缺乏一定的机械强度,一经外界振动,极易分散为粉末而沾附瓶壁,不仅外观不良,使用也成问题。
经验表明,4~25%是浓度的限度范围。
若低于4%,最好加入一些赋形剂。
曾见有应用针入度计(NeedlePenetrometer)测量冻干制剂结构强度的报导,作为生化药物的理想赋形剂应具备纯度高、能参与机体正常代谢、无毒、无抗原性,热原易去除、引湿性小、共熔点高、冻干后的外观洁白细腻和价廉等特点。
常用的赋形剂有乳糖、甘露醇及水解明胶等,其共熔点都较高,见表l—8。
乳糖的特点是成品外观洁白均匀,有一定的结构强度,但引湿性较高。
常用浓度为3~6%。
甘露醇的缺点是成品外观粒度
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- 关 键 词:
- 冷冻 干燥 原理 实践